سامانه مدیریت نشریات علمی دانشگاه شهید بهشتی

تاجیک خاوه, محمود, رحمانی, محمد, صمدی, علی. (1402). اثر تمرین تناوبی سرعتی بر تعادل اکسایشی- ضداکسایشی بیضه و شاخص‌های تولید مثلی موش‌های آزمایشگاهی بزرگ. , 16(2), 46-57. doi: 10.48308/joeppa.2023.103549
محمود تاجیک خاوه; محمد رحمانی; علی صمدی. "اثر تمرین تناوبی سرعتی بر تعادل اکسایشی- ضداکسایشی بیضه و شاخص‌های تولید مثلی موش‌های آزمایشگاهی بزرگ". , 16, 2, 1402, 46-57. doi: 10.48308/joeppa.2023.103549
تاجیک خاوه, محمود, رحمانی, محمد, صمدی, علی. (1402). 'اثر تمرین تناوبی سرعتی بر تعادل اکسایشی- ضداکسایشی بیضه و شاخص‌های تولید مثلی موش‌های آزمایشگاهی بزرگ', , 16(2), pp. 46-57. doi: 10.48308/joeppa.2023.103549
تاجیک خاوه, محمود, رحمانی, محمد, صمدی, علی. اثر تمرین تناوبی سرعتی بر تعادل اکسایشی- ضداکسایشی بیضه و شاخص‌های تولید مثلی موش‌های آزمایشگاهی بزرگ. , 1402; 16(2): 46-57. doi: 10.48308/joeppa.2023.103549

اثر تمرین تناوبی سرعتی بر تعادل اکسایشی- ضداکسایشی بیضه و شاخص‌های تولید مثلی موش‌های آزمایشگاهی بزرگ

نشریه فیزیولوژی ورزش و فعالیت بدنی
مقاله 5، دوره 16، شماره 2 - شماره پیاپی 34، تیر 1402، صفحه 46-57    اصل مقاله (770.1 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.48308/joeppa.2023.103549
نویسندگان
محمود تاجیک خاوه؛ محمد رحمانی* ؛ علی صمدی
گروه تربیت بدنی و علوم ورزشی، دانشکده علوم انسانی، دانشگاه شاهد. تهران، ایران
چکیده
زمینه و هدف: در جوامع امروزی افراد زیادی از اختلال عملکرد دستگاه تناسلی و ناباروری رنج می‌برند. عوامل گوناگونی مانند کم‌تحرکی، برخی بیماری‌ها و مصرف داروها می‌توانند در بروز اختلال باروری نقش داشته باشند و سبب کاهش توان تولید مثلی شوند. از سازوکارهای اصلی اختلال تولید مثل تولید بنیان‌های آزاد و افزایش فشار اکسایشی در بافت بیضه است. تمرین تناوبی سرعتی (SIT) از کارامدترین انواع تمرینات ورزشی از نظر زمانی نسبت به سایر شیوه‌های فعالیت ورزشی است که برای ارتقای میزان فعالیت بدنی و ورزشی می‌تواند به‌کار رود. هدف از پژوهش حاضر، بررسی تأثیر SIT بر وضعیت اکسایشی- ضداکسایشی بیضه و شاخص‌های عملکرد تولید مثلی موش‌های آزمایشگاهی بزرگ بود.
مواد و روش‌ها: در این پژوهش تجربی 16 سر موش بالغ نر آزمایشگاهی بزرگ نژاد ویستار به‌طور تصادفی به گروه‌های کنترل و فعالیت ورزشی تقسیم شدند. سپس گروه فعالیت ورزشی به مدت هشت هفته، هفته‌ای سه جلسه تمرین کردند. 48 ساعت پس از آخرین جلسة تمرین، بیضة موش‌ها پس از بی‌هوشی برداشته و به آزمایشگاه منتقل شد و فعالیت آنزیم‌های سوپراکسید دیسموتاز (SOD) و گلوتاتیون پراکسیداز (GPX)، ظرفیت تام ضداکسایشی (TAC) و مقادیر مالون‌دی‌آلدهید (MDA) و همچنین شاخص‌های عملکرد تولید مثلی مهم در بافت بیضه شامل شاخص تمایز لوله‌ای (TDI)، شاخص اسپرمیوژنز (SI) و ضریب تجمعی (RI) تعیین شد. داده‌ها با استفاده از آزمون تی مستقل در سطح آلفای 05/0 تجزیه‌وتحلیل شد.
نتایج: تحلیل داده‌ها نشان داد میزان MDA بافت بیضة گروه تمرین نسبت به گروه کنترل در حد معناداری بیشتر بود (001/0P˂). بین دو گروه از نظر فعالیت SOD و مقادیر TAC بافت بیضه تفاوت معناداری وجود نداشت؛ ولی میزان فعالیت GPX در گروه تمرین در حد معناداری بیشتر از گروه کنترل بود (05/0P˂). همچنین تعداد سلول‌های لیدیگ، TDI و RI در گروه تمرین در حد معناداری نسبت به گروه کنترل کمتر بود (05/0P˂)؛ ولی از نظر SI بین دو گروه تفاوت معناداری مشاهده نشد (05/0˃P).
نتیجه‌گیری: تمرین تناوبی سرعتی ممکن است فشار اکسایشی را در بافت بیضه افزایش دهد و با تأثیر منفی بر شاخص‌های مهم اسپرماتوژنیک در بیضه، سبب ایجاد اختلال در عملکرد تولید مثلی شود. انجام پژوهش‌های بیشتر در این زمینه با کنترل عوامل اثرگذار و متغیرهای تمرینی (شدت، مدت و حجم تمرین) توصیه می‌شود. 
کلیدواژه‌ها
تمرین تناوبی شدید؛ فشار اکسایشی؛ اسپرماتوژن
عنوان مقاله [English]
The Effect of sprint interval training on testis oxidant/antioxidant status and reproductive indices of adult wistar rats
نویسندگان [English]
Mahmood Tajik Khaveh؛ Mohammad Rahmani؛ Ali Samadi
Department of Physical Education and Sports Sciences, Faculty of Humanities, Shahed University. Tehran Iran
چکیده [English]
Background and Purpose: In contemporary modern societies a lot of people suffer from reproductive system dysfunction and infertility. Various factors such as sedentariness, some diseases and medicines play a role in incidence of reproductive dysfunction, which can lead to decreased reproductive capacity. One of the main mechanisms of which is the increased free radical’s production and oxidative stress in testis. Sprint interval training (SIT) is one of the most time-efficient types of exercise comparing to other exercise methods, which could be used to promote physical activity level. The aim of the present study was to determine the effect of SIT on testis oxidant-antioxidant status and some reproductive indices in adult Wistar rats.
Materials and Methods: In this experimental study, 16 adult male Wistar rats wereobtained and randomly divided into: 1) control and 2) training groups. Then, the training group practiced 3 times a week for eight weeks. Forty-eight hours after the last exercise session, the rats' testis were removed after anesthesia and transferred to the laboratory and the activities of superoxide dismutase (SOD) and glutathione peroxidase (GPX), as well as total antioxidant capacity (TAC) and malondialdehyde (MDA) levels were assessed. Moreover, main reproductive function indices including tubular differentiation index (TDI), spermiogenesis index (SI), and cumulative index (RI) were determined. Data were analyzed using independent samples t-test at the alpha = 0.05.
 
Results: The statistical analysis revealed that the MDA level of the testis in the training group was significantly higher than the control group (P<0.001). There was no significant difference between groups in terms of the SOD activity and TAC. However, in the training group the GPX activity level was significantly higher comparing to the control group (P<0.05). Moreover, the number of Leydig cells, TDI, and RI in the training group were significantly lower in comparison with the control group (P˂0.05); Nevertheless, no significant difference was observed between groups in terms of SI (P>0.05).
Conclusion: SIT may increase oxidative stress in the testicular tissue and negatively affect the main spermatogenic indices in testis, which can lead to reproductive dysfunction. Conducting more research in this area while controlling the other influential factors and training variables (intensity, duration, and volume) is recommended.
 
کلیدواژه‌ها [English]
High-intensity interval training, Oxidative stress, Spermatogenesis
مراجع
  1. Alireza Zakerabasali MK. Protective effects of vitamin E and selenium on spermatogenesis in adult male rat insulin-resistant - Journal of Fasa University of Medical Sciences. JABS. 2013;2(4):308–13.
  2. Aitken RJ, De Iuliis GN. Origins and consequences of DNA damage in male germ cells. Reprod Biomed Online. 2007;14(6):727–33.
  3. Tremellen K. Oxidative stress and male infertility—a clinical perspective. Hum Reprod Update. 2008;14(3):243–58.
  4. Choi SM, Yoo SD, Lee BM. Toxicological characteristics of endocrine-disrupting chemicals: developmental toxicity, carcinogenicity, and mutagenicity. J Toxicol Environ Health B Crit Rev. 2004;7(1):1–23.
  5. Ibtisham F, Chen J, Niu Y, Wang Z, Wu J, Xiao M, et al. Efect of asprin on reproductive profile of male rat. 2016;5(4):5–12.
  6. Hammoud AO, Gibson M, Peterson CM, Hamilton BD, Carrell DT. Obesity and male reproductive potential. J Androl. 2006;27(5):619–26.
  7. Sheweita S, Tilmisany A, Al-Sawaf H. Mechanisms of male infertility: role of antioxidants. Curr Drug Metab. 2005;6(5):495–501.
  8. Wagner H, Cheng JW, Ko EY. Role of reactive oxygen species in male infertility: An updated review of literature. Arab J Urol. 2018;16(1):35–43.
  9. Gomes M, Freitas MJ, Fardilha M. Physical Activity, Exercise, and Mammalian Testis Function: Emerging Preclinical Protein Biomarker and Integrative Biology Insights. Omi A J Integr Biol. 2015;19(9):499–511.
  10. Matos B, Howl J, Ferreira R, Fardilha M. Exploring the effect of exercise training on testicular function. Eur J Appl Physiol. 2019;119(1):1–8.
  11. Asadi M, Rahmani M, Saremi A, Nasiri E. Histomorphometric and histologic effect of endurance swimming on the testis of adult wistar rats. J Appl Exerc Physiol. 2020;
  12. Ghanbari Niaki A, Haghshenas Gatabi R. The Effect of Two Weeks of High-intensity Interval Training on Salvage nucleotide pathway. Journal of Sport and Exercise Physiology. 2022;15(2):1–9. (In Persian)
  13. Salimi Avansar M. Effect of HIIT training on the Levels of Omentin-1 and Body composition characteristics in Sedentary Obese Men. Journal of Sport and Exercise Physiology. 2017;10(2):59–68. (In Persian)
  14. Townsend LK, Islam H, Dunn E, Eys M, Robertson-Wilson J, Hazell TJ. Modified sprint interval training protocols. Part II. Psychological responses. Appl Physiol Nutr Metab. 2017;42(4):347–53.
  15. Zelt JGE, Hankinson PB, Foster WS, Williams CB, Reynolds J, Garneys E, et al. Reducing the volume of sprint interval training does not diminish maximal and submaximal performance gains in healthy men. Eur J Appl Physiol. 2014;114(11):2427–36.
  16. Abbasi B, Samadi A, Bazgir B. The combined effect of high-intensity interval training and intermittent fasting on lipid profile and peroxidation in Wistar rats under high-fat diet. Sport Sci Health. 2020;16(4):645–52.
  17. Asadi M, Rahmani M, Samadi A, Kalantari Hesari A. Acetylsalicylic acid‐induced alterations in male reproductive parameters in Wistar rats and the effect of sprint interval training. Andrologia. 2022;54(3):e14339.
  18. McCord JM, Fridovich I. Superoxide Dismutase. J Biol Chem. 1969;244(22):6049–55.
  19. Ahmadvand H, Dehnoo MG, Cheraghi R, Rasoulian B, Ezatpour B, Azadpour M, et al. Amelioration of altered serum, liver, and kidney antioxidant enzymes activities by sodium selenite in alloxan-induced diabetic rats. Reports Biochem Mol Biol. 2014;3(1):14.
  20. Koracevic D, Koracevic G, Djordjevic V, Andrejevic S, Cosic V. Method for the measurement of antioxidant activity in human fluids. J Clin Pathol. 2001;54(5):356–61.
  21. Lowry O, Rosebrough N, Farr AL, Randall R. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951;193(1):265–75.
  22. Jóźków P, Rossato M. The Impact of Intense Exercise on Semen Quality. Am J Mens Health. 2017;11(3):654–62.
  23. Vaamonde D, Garcia-Manso JM, Hackney AC. Impact of physical activity and exercise on male reproductive potential: a new assessment questionnaire. Rev Andaluza Med del Deport. 2017;10(2):79–93.
  24. Manna I, Jana K, Samanta PK. Effect of different intensities of swimming exercise on testicular oxidative stress and reproductive dysfunction in mature male albino Wistar rats. Indian J Exp Biol. 2004;42(8):816–22.
  25. A. Saremi, S. Changizi Ashtiyani AK. The combination of vitamin E supplementation and intensive exercise on testicular oxidative stress and spermatogenesis in male rats. Sport Physiol. 2014;23:43–54.
  26. Bánfi B, Molnár G, Maturana A, Steger K, Hegedûs B, Demaurex N, et al. A Ca2+-activated NADPH Oxidase in Testis, Spleen, and Lymph Nodes. J Biol Chem. 2001;276(40):37594–601.
  27. Zangar RC, Davydov DR, Verma S. Mechanisms that regulate production of reactive oxygen species by cytochrome P450. Toxicol Appl Pharmacol. 2004;199(3):316–31.
  28. Kaur P, Kaur G, Bansal MP. Tertiary-butyl hydroperoxide induced oxidative stress and male reproductive activity in mice: role of transcription factor NF-kappaB and testicular antioxidant enzymes. Reprod Toxicol. 2006;22(3):479–84.
  29. Aitken RJ, Roman SD. Antioxidant systems and oxidative stress in the testes. Oxid Med Cell Longev. 2008;1(1):15.
  30. Fraczek M, Kurpisz M. Mechanisms of the harmful effects of bacterial semen infection on ejaculated human spermatozoa: potential inflammatory markers in semen. Folia Histochem Cytobiol. 2015;53(3):201–17.
  31. Fraczek M, Kurpisz M. Cytokines in the male reproductive tract and their role in infertility disorders. J Reprod Immunol. 2015;108:98–104.
  32. Fraczek M, Sanocka D, Kamieniczna M, Kurpisz M. Proinflammatory Cytokines as an Intermediate Factor Enhancing Lipid Sperm Membrane Peroxidation in In Vitro Conditions. J Androl. 2008;29(1):85–92.
  33. Maleki BH, Tartibian B. High-Intensity Exercise Training for Improving Reproductive Function in Infertile Patients: A Randomized Controlled Trial. J Obstet Gynaecol Canada. 2017;39(7):545–58.
  34. Hajizadeh Maleki B, Tartibian B, Chehrazi M. The effects of three different exercise modalities on markers of male reproduction in healthy subjects: a randomized controlled trial. Reproduction. 2017;153(2):157–74.
  35. ABBAS S, AMIN M. INFLUENCE OF SWIMMING EXERCISE TRAINING ON SEMEN QUALITY AND OXIDATIVE STRESS STATUS OF THE TESTIS IN OBESE MALE RATS. 2015;3(6):65–73.
  36. Gomes EC, Silva AN, Oliveira MR de. Oxidants, Antioxidants, and the Beneficial Roles of Exercise-Induced Production of Reactive Species. Oxid Med Cell Longev. 2012;2012:1–12.
  37. Maleki BH, Tartibian B. High-Intensity Exercise Training for Improving Reproductive Function in Infertile Patients: A Randomized Controlled Trial. J Obstet Gynaecol Canada. 2017;39(7):545–58.
  38. Meilhac O, Ramachandran S, Chiang K, Santanam N, Parthasarathy S. Role of Arterial Wall Antioxidant Defense in Beneficial Effects of Exercise on Atherosclerosis in Mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2001;21(10):1681–8.
  39. Kang C, O’Moore KM, Dickman JR, Ji LL. Exercise activation of muscle peroxisome proliferator-activated receptor-γ coactivator-1α signaling is redox sensitive. Free Radic Biol Med. 2009;47(10):1394–400.
  40. Li G. The Positive and Negative Aspects of Reactive Oxygen Species in Sports Performance. In: Current Issues in Sports and Exercise Medicine. IntechOpen; 2013. p. 224–50.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 4,210
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 2,390